تکه هایی از متن به عنوان نمونه :
چكیده
کشت بافت ارقام استاندارد و مینیاتور میخک و بهینه سازی شرایط انتقال ژن توسط اگروباکتریوم به آن ها
به کوشش
محمد ایرانی پور
میخک یکی از محبوب ترین، اقتصادی ترین و مهم ترین گل های بریدنی به سبب پیوسته گلدهی و رقم های چند رنگ و منحصر به فرد می باشد. محدودیت های موجود در روش های بهنژادی سنتی (تلاقی و گزینش) و داشتن ویژگی های هتروزیگوسیتی بالا در این گیاه سبب شده است که کاربرد فنون جدید یاخته ای – مولکولی برای بهبود ویژگی های اقتصادی این گیاه ضرورت پیدا کند. این پژوهش به منظور بررسی ریزافزایی ارقام استاندارد ’ ‘Rendz-Vousو مینیاتور’Panamera‘ توسط اندام زایی مستقیم و رویان زایی بدنی، تعیین غلظت بهینه ماده گزینشگر کانامیسین و بهینه سازی شرایط انتقال ژن توسط اگروباکتریوم به آن ها انجام شد. بدین منظور آزمایشی به صورت فاکتوریل در قالب طرح به طور کامل تصادفی با 3 تکرار اجرا شد. در این پژوهش، از قطعه های برگ گیاهان رشد یافته در گلخانه با سن 6 تا 8 هفته و پینه برای تهیه ریزنمونه استفاده گردید. انتقال ژن gus به میخک توسط سویه LBA 4404 باکتری Agrobacterium tumefaciens دارای پلاسمید pBI121 بیان كننده ژن بتاگلوكورونیداز انجام شد. نتایج اندام زایی مستقیم نشان داد که میانگین تعداد شاخساره های نابجا برای هر دو رقم با افزایش غلظت BA به 9/0 میلی گرم در لیتر افزایش می یابد در صورتی که با NAA بیشترین تعداد شاخساره های نابجا در غلظت 3/0 میلی گرم در لیتر به دست آمده و با افزایش غلظت آن کاهش می یابد. ارزیابی تأثیر شرایط تاریکی و روشنایی بر باززایی ارقام توسط رویان زایی بدنی در مدت زمان های 30 و 60 روز نشان داد که در شرایط تاریکی مقدار پینه به دست آمده برای هر دو رقم به طور معنی داری بیش از شرایط روشنایی می باشد. نتایج تشکیل پینه و شاخساره نشان داد که رقم ’Panamera‘ بیش از رقم ’Rendz-Vous‘ به کانامیسین مقاوم است. به نظر می رسد آلودگی باکتریایی تشکیل پینه و شاخساره را به عقب می اندازد. بدون آلودگی باکتریایی تشکیل شاخساره در غلظت 50 میلی گرم در لیتر کانامیسین برای رقم ’Rendz-Vous‘ به طور کامل متوقف شد در حالی که برای رقم ’Panamera‘ این اتفاق در غلظت 100 میلی گرم در لیتر
کانامیسین صورت گرفت. در بهینه سازی انتقال ژن با اگروباکتریوم تأثیر غلظت باکتری، مدت زمان تلقیح ریزنمونه ها با باکتری و مدت زمان هم کشتی بر کارایی انتقال ژن مورد ارزیابی قرار گرفت. آزمون شیمیایی- بافتی و تجزیه PCR پیوستن ژن بتاگلوکورونیداز در شاخساره های تراریخت باززایی شده را اثبات نمود. چگالی نوری 5/0، مدت زمان تلقیح ریزنمونه ها با باکتری به مدت 20 دقیقه و هم کشتی به مدت 3 روز سبب افزایش درصد شاخساره های تراریخت گردید. در این پژوهش رقم استاندارد ’Rendz-Vous‘ نسبت به رقم مینیاتور ’Panamera‘ کارایی انتقال ژن بالاتری نشان داد. اختلاف بین دو رقم در میزان باززایی و کارایی تراریزش به دلیل اندازه کوچکتر ریزنمونه های برگ در رقم مینیاتور ’Panamera‘ قابل توجیه است. گیاهک های باززایی شده از اندام زایی مستقیم، رویان زایی بدنی و تراریزش با اگروباکتریوم در آمیخته پرلایت و ورمیکولیت در شرایط رطوبت نسبی %95 نگهداری و سپس به گلخانه منتقل شدند. این اولین گزارش انتقال ژن به میخک در ایران می باشد.
فهرست مطالب
عنوان صفحه
فصل اول: مقدمه. 2
1-1- منشاء. 3
1-2- اصطلاحشناسی. 4
1-3- انواع میخك. 4
١-4- گیاهشناسی و ریختشناسی میخك. 5
١-5- روشهای افزایش میخك. 7
1-6- اهمیت و اهداف پژوهش. 7
فصل دوم: مروری بر پژوهش های پیشین. 10
2-1- ریزافزایی و کشت بافت میخک. 10
2-1-1- گزینش ریزنمونه و گندزدایی سطحی آن. 10
2-1-2- ریخت زایی و باززایی. 12
2-1-3- رویان زایی بدنی. 13
2-1-3-1- تنظیم کننده های رشد. 14
2-1-3-2- محیط پینه زایی. 16
2-1-3-3- محیط ریشه زایی. 17
2-1-3-4- سن مواد گیاهی و شرایط كاشت. 18
2-1-4- مسیرهای رویان زایی بدنی. 19
2-2- انتقال ژن توسط اگروباكتریوم. 19
2-2-1- اساس ایجاد گال و پلاسمید Ti 20
2-2-2- انتقال T– DNA.. 20
2-2-3- عوامل مؤثر بر انتقال توسط اگروباكتریوم. 22
2-2-3-1- نژادگان (ژنوتیپ). 22
2-2-3-1-1- ریزنمونه های شروع كننده. 22
2-2-3-1-2- سویه باكتری. 24
2-2-3-1-3- چگالی نوری. 25
2-2-3-1-4- انگیزاننده های ژن های بیماری زا. 26
2-2-3-1-5- مدت زمان هم كشتی. 27
2-2-3-1-6- گزینش با کانامیسین. 28
فصل سوم: مواد و روشها. 30
3-1- كشت بافت. 30
3-١-1- مواد گیاهی. 30
3-١-2- قسمتهای گیاهی مورد استفاده در كشت بافت. 30
3-١-٣- گندزدایی ریزنمونهها و وسایل. 31
3-١-4- آمادهسازی ریزنمونهها برای استقرار. 32
3-١-5- محیط كشت. 32
3-2- انتقال توسط اگروباکتریوم. 34
3-2-1- مواد. 34
3-2-1-1- بافر STET. 34
3-2-1-2- بافر الكتروفورز. 34
3-2-1-3- بافر CTAB.. 35
3-2-1-4- بافر TE. 35
3-2-1- 5- بافر سنجش GUS. 35
3-2-1-6- بافر بارگذاری. 35
3-2-1-7- محلول ذخیره آنتی بیوتیك كانامیسین. 36
3-2-1-8- محلول ذخیره آنتی بیوتیك ریفامپیسین. 36
3-2-1-9- محلول ذخیره آنتی بیوتیک سفاتاکسیم. 36
3-2-1-10- محلول ذخیره استوسیرینگون. 36
3-2-1-11- محلول ذخیره نفتالن استیک اسید. 37
3-2-1-12- محلول ذخیره بنزیل آدنین. 37
3-2-1-13- محیط كشت LB (Luria–Bertani) 37
3-2-1-14- سویه A. tumefaciens. 37
3-3- روش ها. 38
3-3-1- تهیه ریزنمونه. 38
3-3-2- تهیه محیط های كشت بافت گیاهی. 38
3-3-3- آغازگرها. 40
3-4- روش ها. 40
3-4-1- آماده سازی باكتری برای انجام انتقال ژن به ریزنمونه ها 40
3-4-2- استخراج DNA پلاسمیدهای نو ترکیب. 41
3-4-3- آماده سازی ریزنمونه ها و اگروباكتریوم برای انتقال ژن به میخک. 42
3-4-4- پیش آماده سازی ریزنمونه ها. 43
3-4-5- روش کار انتقال ژن به گیاه. 43
3-4-6- گزینش و باززایی گیاهان تراریخت. 44
3-4-7- استخراج DNA از بافت های گیاهی با استفاده از محلول CTAB 45
3-4-9- روش کار. 47
3-4-10- آزمون زنجیره ای پلیمراز ((PCR.. 49
3-4-11- تهیه ژل آگارز و انجام الکتروفورز برای بررسی نتایج آزمون PCR.. 51
3-4-12- آزمون شیمیایی- بافتی برای تعیین فعالیت تراریخت GUS در شاخسارههای تراریخت. 51
3-4-13- واکاوی داده ها. 52
فصل چهارم: نتایج و بحث. 54
4-1- کشت بافت. 54
4-1-1- تشکیل شاخساره نابجا از ریزنمونه های برگ ارقام استاندارد و مینیاتور میخک. 54
4-1-1-1- مواد گیاهی. 54
4-1-1-2- گندزدایی. 54
4-1-1-3- ریزنمونه ها و محیط باززایی. 55
4-2- انتقال ژن با واسطه اگروباکتریوم. 56
4-2-1- آزمایش مقدماتی. 58
4-2-1-1- گزینش با کانامیسین. 58
4-2-2- تولید گیاهان تراریخت. 61
4-2-3- تأیید گیاهان تراریخت با سنجش فعالیت GUS. 63
4-3- آنالیز PCR.. 64
4-4- تأثیر غلظت باکتری. 67
4-5- تاثیر زمان مایه زنی. 71
4-6- تاثیر مدت زمان هم کشتی بر کارایی انتقال ژن. 69
4-7- برهمكنش سه عامل چگالی نوری باکتری، مدت زمان مایه زنی ریزنمونه ها با باکتری و مدت زمان هم کشتی. 73
پیشنهادها. 77
منابع. 78
فهرست جدولها
عنوان صفحه
جدول 1-3- مواد تشکیل دهنده محلولهای پایه محیط كشت MS. 34
جدول 2-3- انواع محیط های کشت مورد استفاده.. 40
جدول 3-3- مواد مورد نیاز برای استخراج DNA ژنومی 47
جدول 4-3- مواد لازم در واكنش PCR.. 51
جدول 5-3- دوره های دمایی واکنش های PCR.. 51
جدول 1-4- اثر غلظت های مختلف BA و NAA بر تعداد شاخساره های نابجای باززایی شده از ریزنمونه های برگ رقم استاندارد’Rendz-Vous‘ . 57
جدول 2-4- اثر غلظت های مختلف BA و NAA بر تعداد شاخساره های نابجای باززایی شده از ریز نمونه های برگ رقم ’Panamera‘.. 57
جدول 3-4- اندام زایی از ریزنمونه های برگ دو رقم میخک روی محیط دارای کانامیسین با و بدون آلودگی توسط Agrobacterium tumefaciens LBA 4404. 60
جدول4-4- مقایسه تعداد و درصد شاخساره های تراریخت به دست آمده در تیمار چگالی های نوری مختلف باکتری.. 70
جدول 5-4- مقایسه تعداد و درصد شاخساره های تراریخت به دست آمده در مدت زمان های مایه زنی ریز نمونه ها با باکتری.. 71
جدول6-4- مقایسه تعداد و درصد شاخساره های تراریخت به دست آمده در مدت زمان های هم کشتی مختلف ریز نمونه ها با باکتری 74
جدول 7-4- مقایسه درصد شاخساره های تراریخت به دست آمده در سه عامل چگالی نوری باکتری، زمان مایه زنی با باکتری و مدت هم کشتی ریز نمونه ها با باکتری در سه سطح مختلف برای رقم ’Rendz-Vous‘ 76
جدول 8-4- مقایسه درصد شاخساره های تراریخت به دست آمده در سه عامل چگالی نوری باکتری، زمان مایه زنی با باکتری و مدت هم کشتی ریز نمونه ها با باکتری در سه سطح مختلف برای رقم ’Panamera‛ 77
فهرست نگارهها
عنوان صفحه
نگاره1-3. جایگاه های برشی پلاسمید pBI121. 43
نگاره1-4- ایجاد شاخساره و پینه پس از گذشت 8 تا 10 هفته از مایه کوبی برای رقم
Rendz–Vous 63
نگاره 2-4- سنجش ژن GUS در رقم ‘Rendz–Vous‘. 64
نگاره 3-4- سنجش ژن GUS در رقم ‘Panamera‘ 65
نگاره 4-4- نتایج آزمون PCR در رقم ’Rendz–Vous‘. وجود گیاهان تراریخت میخک با جفت آغازگرهای ژن GUS برای تأیید وجود این ژن. چاهک M نشانگر kb10، چاهک 1 کنترل منفی، چاهک 2 تا 7 نمونه های مربوط به گیاهان تراریخت و چاهک 8 و 9 مربوط به گیاهان ناتراریخت…. 66
نگاره 5-4- نتایج آزمون PCR در رقم ‘Panamera‘. گیاهان تراریخت میخک با جفت آغازگرهای ژن gus برای تأیید وجود این ژن. چاهک M نشانگر kb10، چاهک 1 کنترل منفی، چاهک 2 تا 4 نمونه های مربوط به گیاهان تراریخت و چاهک 5 تا 7 مربوط به گیاهان ناتراریخت. 67
نگاره 6-4- سنجش ژن GUS در ریزنمونه های پینه (A,B,C) و اندام های گل (D) باززایی شده در رقم ‘Rendz–Vous‘. 68
کوتاههها
6- بنزیل آمینو پیورین (6-Benzyl Amino-9-(Tetrahydropyran-2– Yl)-9H-Purine)
BAP
پیشبر ویروس موزائیک گل کلم (Cauliflower Mosaic Virus Promotor)
CaMV 35S
آب دوبار تقطیر (Double Distilled Water)
DDW
توفوردی (2و4- دیکلروفنوکسی استیک اسید) (2,4-Dichlorophenoxy Acetic Acid)
2,4-D
اتیلن دیآمین تترا استیک اسید (Ethylene Diamine Tetra Acetic Acid)
EDTA
بتاگلوکورونیداز (Β-Glucuronidase)
GUS
محیط کشت لوریا – برتانی (Luria-Bertani Medium)
LB
محیط کشت موراشیگی و اسکوگ (Murashige And Skoog Medium – 1962)
MS
نفتالن استیک اسید (Naphthalene Acetic Acid)
NAA
ژن نئومایسین فسفوترانسفراز (Neomycin Phosphotransferase Gene)
NptІІ
پلیوینیلپیرولیدون (Polyvinylpyrolidone)
PVP
بافر سوکروز تریس اتیلن دی آمین تترا استیک اسید تریتون (Sucrose Tris EDTA Tritone Buffer)
STET
بافر تریس بورات اتیلن دیآمین تترا استیک اسید (Tris Burate EDTA Buffer)
TBE
بافر تریس اتیلن دیآمین تترا استیک اسید (Tris EDTA Buffer)
TE
DNA منتقل شونده (Transferred DNA)
T-DNA
تیدیازرون (Thidiazuron)
TDZ
وزن / حجم (Weigh / Volume)
W/V
فصل اول
1- مقدمه
گل هدیهای است به بشر از جانب خالق هستی و موهبتی است برای تعالی روان، اندیشه و خرد انسان. اگر نگاهی به تمدن چندین هزار ساله ایران داشته باشیم، نقش داریوش بزرگ در مجموعه تخت جمشید كه یك دسته گل در دست دارد نشاندهنده این است كه فرهنگ مصرف گل از سالهای دور در بین ایرانیها مرسوم بوده است.
میخك[1] بیش از ٢٠٠٠ سال است كه به دست بشر كاشته میشود. این گل یكی از مهمترین محصولات گلكاری دنیا میباشد كه هم به جهت زیبایی و گوناگونی رنگ و هم از نظر اقتصادی از اهمیت قابل توجهی برخوردار است (لارسون، 1375؛ Burich, 1996). در ایران كشت و كار میخك از سالها پیش متداول بوده است و در حال حاضر برای تولید گل بریدنی در سطح وسیع كشت میشود (خلیقی، 1380).
كوششهای وسیعی در سراسر جهان برای بهبود كمیت و كیفیت میخك در جریان است. امروزه اهداف بهنژادی آن شامل: افزایش دامنه رنگ گلها، معرفی شكلهای جدید گلها، افزایش تحمل به نور كم و دامنه وسیعتر دما، بهبود شاخهدهی در انواع مینیاتور، افزایش پراكندگی تولید، طولانی كردن عمر پس از برداشت، قوی كردن ساقه، مقاومت به حشرات و بیماریها و افزایش عطر آن میباشد (Bunt and Cockshull, 1985).
1-1- منشاء
میخك با نام علمی Dianthus caryophyllus L. یكی از گیاهان بسیار قدیمی است و پیشینه كشت و كار طولانی دارد (خلیقی، 1380). عقیده براین است كه میخك بومی نواحی مدیترانه است (لارسون، 1375). میخكها بومی نواحی سرد كوهستانی از جنوب اروپا تا هند میباشند. گونههای بومی آن تنها در فصل بهار به علت افزایش دما و طول روز گل میدهند (لارسون، 1375، Tutin et al, 1993). ارقام جدید میخك ویژگی پیوسته گلدهی[2] داشته و در شمالغربی اروپا و آمریكای شمالی و در مناطق مدیترانهای در گلخانههای پلاستیكی بدون سیستم گرمایش برای تولید گل بریدنی پرورش داده میشوند (Bunt and Cockshull, 1985) همچنین در مناطق استوایی در صورت مناسب بودن عرض جغرافیایی كه موجب كاهش دمای هوا میشود (مانند كلمبیا و كنیا) میتواند كشت شود (Bunt and Cockshull, 1985). بشر از قرن شانزدهم روی میخك بومی كار بهنژادی انجام داده است. بهنژادی برای پیوسته گلدهی نژاد میخك در سال ١٨٤٠ در فرانسه انجام و در سال ١٨٥٢ در آمریكا معمول شد. معروفترین ارقام خارجی میخك از رقم ’William Sim‘ كه در سال ١٩٣٨ یا ١٩٣٩ توسط ویلیام سیم تولید گردید، بدست آمدهاند (خلیقی، 1380). میخكهای امروزی شباهت بسیار كمی به اسلاف خود دارند. این میخكها در تمام طول سال گل میدهند و دارای ساقههای بلند و محكم با گلهای درشت و پُر پر و رنگهای گوناگون میباشند (لارسون، 1375).
1-2- اصطلاحشناسی[3]
در حدود ٣٠٠ سال پیش از میلاد مسیح تئوفراستوس[4] در باره میخك مطالبی نوشته است كه ترجمه آن از زبان یونانی گل خدایان[5] معنی میدهد كه دلیل نامگذاری آن بوی خوش این گل است. نام زیرگونههای گونه caryophyllus به احتمال منشعب از واژه Coronation (تاجگذاری) میباشد، شاید به آن جهت كه در اساطیر یونان تاج گلی از این گیاه برای قهرمانان درست میشده است (لارسون، 1375). نام انگلیسی میخك Carnation می باشد. این نام گرفته شده از واژه لاتین Carnis می باشد كه اشاره به رنگ صورتی كم رنگ بعضی ارقام آن دارد (Brickell, 1997). در یونان Dianthus به معانی گل خوشبخت[6] و گل خدایان میباشد. همچنین عقیده براین است كه نام Dianthus از واژههای یونانی Dios به معنای خدا و Anthus به معنای گل گرفته شده است )لارسون، 1375؛ Bunt and Marjorie, 1982).
Carnation
[2]. Perpetual-flowering